Dr. Redmond Smyth
Genom-Architektur und Evolution von RNA-Viren
Unsere Forschung
Die Arbeitsgruppe von Redmond Smyth untersucht, wie RNA-Viren die Struktur von RNA während ihrer Replikation und Evolution einsetzen. Ziel des Teams ist es, ihr Wissen über die Architektur von RNA-Genomen zu nutzen, um die Entwicklung von maßgeschneiderten RNA-basierten Therapeutika zu ermöglichen.
RNA-Viren spielen eine wichtige Rolle als Erreger neu auftretender Infektionskrankheiten. Die meisten gängigen antiviralen Medikamente und Pharmazeutika zielen dabei auf Proteine ab. Innerhalb der viralen Genome sind es jedoch häufig RNA-Strukturen, die mit Proteinen des Virus und des Wirts interagieren und damit eine neuartige Angriffsfläche für Medikamente bieten. Für die Entwicklung solcher neuartiger RNA-basierter Therapeutika ist zunächst ein detailliertes Verständnis dieser Prozesse notwendig.
Redmond Smyth und sein Team untersuchen RNA-basierte Mechanismen der Vermehrung (Replikation) und Evolution von RNA-Viren. Bei ihrer Arbeit setzen sie eine Kombination aus molekularer Virologie, RNA-Biochemie und mathematischer Modellierung ein.
Ihr Ziel ist es, essentielle RNA-Strukturen als neue Ansatzpunkte zur Bekämpfung von Viren zu identifizieren und zu verstehen, wie die RNA-Struktur die Evolution von Viren beeinflusst, um so bessere Impfstoffe und Pandemievorbereitung zu ermöglichen. Ihre aktuelle Arbeit konzentriert sich auf die Analyse von Einzelmolekülen- und Einzel-Virionen unter Verwendung von genomweiten chemischen Hochdurchsatz-Sondierungstechnologien sowie mutationsbasierten funktionellen Screens. Darüber hinaus entwickeln die Forscher neue Technologien wie RNA-RNA-seq, Einzelmolekül-RNA-Struktursondierung und sequenzgekoppelte Mikroskopie. Das übergreifende Ziel der Gruppe ist es, das Wissen über die Genomarchitektur von RNA-Viren zu nutzen, um RNA-basierte Therapien voranzutreiben.
Team-Mitglieder
Dr. Redmond Smyth
Gruppenleiter
Jianhui Li
Doktorand
Forschungsprojekte
RNA ist ein vielseitiges Molekül. Sie ist Botenmolekül für die Proteinsynthese, verfügt aber ebenfalls über nicht-kodierende Elemente. Diese nicht-kodierenden Elemente regulieren die Aktivität von Zellen durch spezifische Interaktionen mit Proteinen, kleinen Molekülen und sogar anderen Nukleinsäuren. RNA-Viren nutzen diese nicht-kodierenden RNA-Elemente in fast jeder Phase ihres Vermehrungszyklus aus, um das Spleißen, die Translation, das Umgehen der Wirtszellabwehr, die virale Evolution und die Zugänglichkeit für die Bindung von Medikamenten zu beeinflussen. Diese Eigenschaften haben einen Vorteil: Nicht-kodierende RNA kann das nützliche Ziel antiviraler Interventionen sein. Und dies könnte die Behandlung von Infektionskrankheiten revolutionieren.
Die Arbeitsgruppe verwendet einen integrativen strukturellen, funktionellen und evolutionären Ansatz zur Entdeckung und mechanistischen Charakterisierung von nicht-kodierenden RNA-Strukturen, die an der Replikation und Evolution von Viren beteiligt sind. Bei RNA ist es, genau wie bei Proteinen, in der Regel die übergeordnete Struktur und nicht die Primärsequenz, die ihre Funktion bestimmt. Wir wissen noch nicht genau, wie genau die RNA-Struktur verschiedene biologische Funktionen steuert. Darüber hinaus erfährt RNA leicht strukturelle Veränderungen, die es ihr ermöglichen, zwischen verschiedenen Funktionen bzw. An- und Aus-Zuständen zu wechseln oder in verschiedenen Umgebungen und in Gegenwart von Liganden spezifische Faltungen anzunehmen. Diese Dynamik der RNA hat traditionell die strukturelle Charakterisierung der RNA durch biochemische und biophysikalische Ansätze vereitelt. Die Nachwuchsgruppe von Redmond Smyth arbeitet daran, die Beziehung zwischen Struktur und -Funktion von RNA zu entschlüsseln. Dafür entwickeln die Forscher neue Methoden zur Untersuchung der RNA-Strukturdynamik. Langfristig soll dieses Wissen der Entwicklung kleinmolekularer Medikamente nutzen, die als neuartige antivirale Strategie in die RNA-Struktur eingreifen.
Ein weiteres zentrales Thema ist die Frage, wie RNA-Struktur die virale Evolution beschränkt. Retroviren, wie z.B. HIV, verpacken zwei Kopien ihres RNA-Genoms in jedes Virion. Das ermöglicht Rekombination (Template-Switching) und die Bildung von Genom-Chimären während der Replikation. Eine andere weit verbreitete Strategie, die bei Rotaviren und Grippeviren beobachtet wird, ist die Segmentierung des Genoms, die zu einer genetischen Neuanordnung (Reassortment) führt. Reassortment und Rekombination sind Prozesse, die nicht zufällig stattfinden und von denen bekannt ist, dass sie von der RNA-Sequenz und -Struktur abhängen. Die zugrundeliegenden Mechanismen sind bisher jedoch nur unzureichend erforscht. Die Nachwuchsgruppe von Redmond Smyth untersucht diese Mechanismen mit dem Ziel, Strategien zur Vorbeugung und Bekämpfung von Krankheiten zu verbessern. Es gilt, die Entstehung neuer Virusstämme auf der Bevölkerungsebene zu verstehen, beispielsweise potenziell pandemischer Grippeviren, die durch die genetische Neuanordnung des viralen Genoms in Menschen, Schweinen oder Vögeln entstehen. Auf individueller Ebene geht es um die Frage, wie die RNA-Struktur dazu beiträgt, das Immunsystem zu umgehen und die Entstehung arzneimittelresistenter Viren begünstigt. Diese grundlegenden Erkenntnisse sollen es in Zukunft ermöglichen, die Rekombination und genetische Neuanordnung zur Entwicklung sicherer Gentherapie-Vektoren und leistungsfähiger neuer Impfstoffplattformen zu nutzen.
Im Fokus
HIV: Auf die Faltung kommt es an
Ribonukleinsäure (RNA) faltet sich zu komplexen Strukturen, die es ihr ermöglichen, mit anderen Molekülen in der Zelle zu interagieren. Kleinste Unterschiede in der Faltung können bei HIV-1 entscheidend dafür sein, ob virale RNA „verpackt“ wird und sich die Viren somit vermehren können. Dies haben Forschende im Labor von Redmond Smyth herausgefunden, indem sie eine auf RNA-Strukturen fokussierte Methode mittels neuer Sequenzierungstechnologie weiterentwickelt haben. Ihre Erkenntnisse könnten dazu beitragen, neue antivirale Mittel zu entwickeln, und wurden im Fachmagazin Nature Methods veröffentlicht.
Publikationen
2024
Isoform-specific RNA structure determination using Nano-DMS-MaP
Gribling-Burrer AS, Bohn P, Smyth RP (2024)
Nature Protocols 19 (6): 1835-1865
NEAT1 promotes genome stability via m6A methylation-dependent regulation of CHD4
Mamontova V, Trifault B, Gribling-Burrer AS, Bohn P, Boten L, Preckwinkel P, Gallant P, Solvie D, Ade CP, Papadopoulos D, …, Smyth RP, Burger K (2024)
Genes & Development 38 (17-20): 915-930
Recruitment of multi-segment genomic RNAs by Bluetongue virus requires a preformed RNA network
Sung PY, Phelan JE, Luo D, Kulasegaran-Shylini R, Bohn P, Smyth RP, Roy P (2024)P., Roy P (2024)
Nucleic Acids Research 52 (14): 8500-8514
Sequencing accuracy and systematic errors of nanopore direct RNA sequencing
Liu-Wei W, van der Toorn W, Bohn P, Hölzer M, Smyth RP, von Kleist M (2024)
BMC Genomics 25 (1): 528
2023
Cis-mediated interactions of the SARS-CoV-2 frameshift RNA alter its conformations and affect function
Pekarek L, Zimmer MM, Gribling-Burrer AS, Buck S, Smyth RP, Caliskan N (2023)
Nucleic Acids Research 51 (2): 728–743
SND1 binds SARS-CoV-2 negative-sense RNA and promotes viral RNA synthesis through NSP9
Schmidt N, Ganskih S, Wei Y, Gabel A, Zielinski S, Keshishian H, Lareau CA, Zimmermann L, Makroczyova J, Pearce C, …, Erhard F, Munschauer M (2023)
Cell 186 (22): 4834-4850.e23
Advanced fluorescence microscopy in respiratory virus cell biology
Xie E, Ahmad S, Smyth RP, Sieben C (2023)
Advances in Virus Research 116: 123-172
Sequential disruption of SPLASH-identified vRNA-vRNA interactions challenges their role in influenza A virus genome packaging
Jakob C, Lovate GL, Desirò D, Gießler L, Smyth RP, Marquet R, Lamkiewicz K, Marz M, Schwemmle M, Bolte H (2023)
Nucleic Acids Research 51 (12): 6479-6494
Nano-DMS-MaP allows isoform-specific RNA structure determination
Bohn P, Gribling-Burrer AS, Ambi UB, Smyth RP (2023)
Nature Methods 20 (6): 849-859
2022
Short- and long-range interactions in the HIV-1 5' UTR regulate genome dimerization and packaging
Ye L, Gribling-Burrer AS, Bohn P, Kibe A, Börtlein C, Ambi UB, Ahmad S, Olguin-Nava M, Smith M, Caliskan N, von Kleist M, Smyth RP (2022)
Nature Structural & Molecular Biology 29 (4): 306-319
2021
The short isoform of the host antiviral protein ZAP acts as an inhibitor of SARS-CoV-2 programmed ribosomal frameshifting
Zimmer MM, Kibe A, Rand U, Pekarek L, Ye L, Buck S, Smyth RP, Cicin-Sain L, Caliskan N (2021)
Nature Communications 12 (1): 7193
RNA Structures and Their Role in Selective Genome Packaging
Ye L, Ambi UB, Olguin-Nava M, Gribling-Burrer AS, Ahmad S, Bohn P, Weber MM, Smyth RP (2021)
Viruses 13 (9): 1788
2019
The evolution of RNA structural probing methods: From gels to next-generation sequencing
Mailler E, Paillart J, Marquet R, Smyth RP, Vivet-Boudou V (2019)
Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA 10 (2): e1518
2018
In cell mutational interference mapping experiment (in cell MIME) identifies the 5' polyadenylation signal as a dual regulator of HIV-1 genomic RNA production and packaging
Smyth RP, Smith MR, Jousset A, Despons L, Laumond G, Decoville T, Cattenoz P, Moog C, Jossinet F, Mougel M, …, Kleist M, Marquet R (2018)
Nucleic Acids Research 46 (9): e57
RNA Structure - A Neglected Puppet Master for the Evolution of Virus and Host Immunity
Smyth RP, Negroni M, Lever AM, Mak J, Kenyon JC (2018)
Frontiers in Immunology 9: 2097
Structural and Functional Motifs in Influenza Virus RNAs
Ferhadian D, Contrant M, Printz-Schweigert A, Smyth RP, Paillart J, Marquet R (2018)
Frontiers in Microbiology 9: 559
2017
HIV-1 Pr55Gag binds genomic and spliced RNAs with different affinity and stoichiometry
Bernacchi S, Abd El-Wahab EW, Dubois N, Hijnen M, Smyth RP, Mak J, Marquet R, Paillart J (2017)
RNA Biology 14 (1): 90-103
2016
HIV-1 Mutation and Recombination Rates Are Different in Macrophages and T-cells
Cromer D, Schlub TE, Smyth RP, Grimm AJ, Chopra A, Mallal S, Davenport MP, Mak J (2016)
Viruses 8 (4): 118
The Life-Cycle of the HIV-1 Gag-RNA Complex
Mailler E, Bernacchi S, Marquet R, Paillart J, Vivet-Boudou V, Smyth RP (2016)
Viruses 8 (9): E248
MIMEAnTo: profiling functional RNA in mutational interference mapping experiments
Smith MR, Smyth RP, Marquet R, Kleist M (2016)
Bioinformatics 32 (21): 3369-3370
2015
Mutational interference mapping experiment (MIME) for studying RNA structure and function
Smyth RP, Despons L, Huili G, Bernacchi S, Hijnen M, Mak J, Jossinet F, Weixi L, Paillart J, Kleist M, Marquet R (2015)
Nature Methods 12 (9): 866-72
Evaluation of anti-HIV-1 mutagenic nucleoside analogues
Vivet-Boudou V, Isel C, El Safadi Y, Smyth RP, Laumond G, Moog C, Paillart J, Marquet R (2015)
The Journal of Biological Chemistry 290 (1): 371-83
Properties of HIV-1 associated cholesterol in addition to raft formation are important for virus infection
Hawkes D, Jones KL, Smyth RP, Pereira CF, Bittman R, Jaworowski A, Mak J (2015)
Virus Research 210: 18-21
2014
Specific recognition of the HIV-1 genomic RNA by the Gag precursor
Abd El-Wahab EW, Smyth RP, Mailler E, Bernacchi S, Vivet-Boudou V, Hijnen M, Jossinet F, Mak J, Paillart J, Marquet R (2014)
Nature Communications 5: 4304
Identifying recombination hot spots in the HIV-1 genome
Smyth RP, Schlub TE, Grimm AJ, Waugh C, Ellenberg P, Chopra A, Mallal S, Cromer D, Mak J, Davenport MP (2014)
Journal of Virology 88 (5): 2891-902
Fifteen to twenty percent of HIV substitution mutations are associated with recombination
Schlub TE, Grimm AJ, Smyth RP, Cromer D, Chopra A, Mallal S, Venturi V, Waugh C, Mak J, Davenport MP (2014)
Journal of Virology 88 (7): 3837-49
2013
Improved quantification of HIV-1-infected CD4+ T cells using an optimised method of intracellular HIV-1 gag p24 antigen detection
Yang H, Yorke E, Hancock G, Clutton G, Sande N, Angus B, Smyth RP, Mak J, Dorrell L (2013)
Journal of Immunological Methods 391 (1-2): 174-8
Intracellular Dynamics of HIV Infection
Petravic J, Ellenberg P, Chan M, Paukovics G, Smyth RP, Mak J, Davenport MP (2013)
Journal of Virology 88 (2): 1113-24
A functional sequence-specific interaction between influenza A virus genomic RNA segments
Gavazzi C, Yver M, Isel C, Smyth RP, Rosa-Calatrava M, Lina B, Moulès V, Marquet R (2013)
PNAS 110 (41): 16604-9
2012
The Origin of Genetic Diversity in HIV-1
Smyth RP, Davenport MP, Mak J (2012)
Virus Research 169 (2): 415-29
2011
8-Modified-2'-deoxyadenosine analogues induce delayed polymerization arrest during HIV-1 reverse transcription
Vivet-Boudou V, Isel C, Sleiman M, Smyth RP, Ben Gaied N, Barhoum P, Laumond G, Bec G, Götte M, Mak J, …, Burger A, Marquet R (2011)
PLOS One 6 (11): e27456
Early events of HIV-1 infection: can signaling be the next therapeutic target?
Jones KL, Smyth RP, Pereira CF, Cameron PU, Lewin SR, Jaworowski A, Mak J (2011)
Journal of neuroimmune pharmacology : the official journal of the Society on NeuroImmune Pharmacology 6 (2): 269-83
Labeling of multiple HIV-1 proteins with the biarsenical-tetracysteine system
Pereira CF, Ellenberg PC, Jones KL, Fernandez TL, Smyth RP, Hawkes DJ, Hijnen M, Vivet-Boudou V, Marquet R, Johnson I, Mak J (2011)
PLOS One 6 (2): e17016
2010
Accurately measuring recombination between closely related HIV-1 genomes
Schlub TE, Smyth RP, Grimm AJ, Mak J, Davenport MP (2010)
PLOS Computational Biology 6 (4): e1000766
Reducing chimera formation during PCR amplification to ensure accurate genotyping
Smyth RP, Schlub TE, Grimm A, Venturi V, Chopra A, Mallal S, Davenport MP, Mak J (2010)
Gene 469 (1-2): 45-51
2009
The A-rich RNA sequences of HIV-1 pol are important for the synthesis of viral cDNA
Keating CP, Hill MK, Hawkes DJ, Smyth RP, Isel C, Le S, Palmenberg AC, Marshall JA, Marquet R, Nabel GJ, Mak J (2009)
Nucleic Acids Research 37 (3): 945-56